Yeast Kluyveromyces(효모 클루이베로마이세스)란 무엇입니까?
Yeast Kluyveromyces 효모 클루이베로마이세스 - Producer microorganisms can be the micromycetes Aspergillus, Penicillium, Rhizopus and Fusarium, the yeast Kluyveromyces and the bacteria Clostridium thermosuccinogenes and Bacillus subtilis, using inulin, sucrose, fructose, lactose, raffinose, xylose as sources of carbon. [1]생산자 미생물은 이눌린, 자당, 과당, 유당, 라피노스, 자일로스를 탄소원으로 사용하는 미생물군 Aspergillus, Penicillium, Rhizopus 및 Fusarium, 효모 Kluyveromyces 및 박테리아 Clostridium thermosuccinogenes 및 Bacillus subtilis일 수 있습니다. [1]
Thermotolerant Yeast Kluyveromyces 내열성 효모 Kluyveromyces
parapolymorpha were found to be at least an order of magnitude larger than those of the thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus. [1] The thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus is a promising bioethanol producer, but its fermentation arrested earlier at high temperatures. [2] To improve the efficiency of second-generation bioethanol production, simultaneous Saccharification and Fermentation (SSF) of top agricultural wastes in the Philippines such as rice straw and banana pseudostem was conducted using commercial enzymes and the thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus. [3] BackgroundThe thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus is a potential candidate for high-temperature fermentation. [4] Thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus can assimilate xylose but cannot produce ethanol from xylose under anaerobic conditions. [5]parapolymorpha는 내열성 효모 Kluyveromyces marxianus보다 적어도 10배 더 큰 것으로 밝혀졌습니다. [1] 내열성 효모 Kluyveromyces marxianus는 유망한 바이오에탄올 생산자이지만 고온에서 발효가 더 일찍 중단됩니다. [2] 2세대 바이오에탄올 생산의 효율을 높이기 위해 볏짚, 바나나 유사줄기 등 필리핀 최고 농업폐기물의 동시당화발효(SSF)를 상업용 효소와 내열성 효모인 Kluyveromyces marxianus를 이용하여 진행하였습니다. [3] 배경 내열성 효모 Kluyveromyces marxianus는 고온 발효의 잠재적 후보입니다. [4] 내열성 효모 Kluyveromyces marxianus는 자일로스를 동화할 수 있지만 혐기성 조건에서 자일로스로부터 에탄올을 생성할 수 없습니다. [5]
Utilizing Yeast Kluyveromyces
cerevisiae, established yeast expression systems including the methylotrophic yeasts Pichia pastoris and Hansenula polymorpha, the dimorphic yeasts Arxula adeninivorans and Yarrowia lipolytica, the lactose-utilizing yeast Kluyveromyces lactis, the fission yeast Schizosaccharomyces pombe, and upcoming yeast platforms, namely, Kluyveromyces marxianus, Candida utilis, and Zygosaccharomyces bailii, are compiled with special emphasis on their genetic toolbox for recombinant protein production. [1] cerevisiae, established yeast expression systems including the methylotrophic yeasts Pichia pastoris and Hansenula polymorpha, the dimorphic yeasts Arxula adeninivorans and Yarrowia lipolytica, the lactose-utilizing yeast Kluyveromyces lactis, the fission yeast Schizosaccharomyces pombe, and upcoming yeast platforms, namely, Kluyveromyces marxianus, Candida utilis, and Zygosaccharomyces bailii, are compiled with special emphasis on their genetic toolbox for recombinant protein production. [2]cerevisiae, methylotrophic 효모 Pichia pastoris 및 Hansenula polymorpha, 이형 효모 Arxula adeninivorans 및 Yarrowia lipolytica, 유당 활용 효모 Kluyveromyces lactis, 분열 효모 Schizosaccharomyces pombe 및 향후 출시될 효모 플랫폼, 즉 utilis 및 Zygosaccharomyces bailii는 재조합 단백질 생산을 위한 유전적 도구 상자를 특별히 강조하여 편집되었습니다. [1] cerevisiae, methylotrophic 효모 Pichia pastoris 및 Hansenula polymorpha, 이형 효모 Arxula adeninivorans 및 Yarrowia lipolytica, 유당 활용 효모 Kluyveromyces lactis, 분열 효모 Schizosaccharomyces pombe 및 향후 출시될 효모 플랫폼, 즉 utilis 및 Zygosaccharomyces bailii는 재조합 단백질 생산을 위한 유전적 도구 상자를 특별히 강조하여 편집되었습니다. [2]
Fermenting Yeast Kluyveromyces 발효 효모 클루이베로마이세스
An association of lactic acid bacteria Lactobacillus paracasei 4m-2b, Lactobacillus fermentum A15, acetic acid bacteria Acetobacter fabarium 4-4M, and lactose-fermenting yeast Kluyveromyces marxianus 4МА, which has antagonistic activity against fungal and bacterial cultures from the genera Escherichia, Salmonella, Sarcina, Mycobacterium, Candida, Fusarium, Penicillium was used as a starter for the beverage. [1] For this system, glucose and galactose metabolism were uncoupled in Saccharomyces cerevisiae by deleting two negative regulatory genes, GAL80 and MIG1, and introducing the essential lactose hydrolase LAC4 and lactose transporter LAC12, from the native but inefficient lactose fermenting yeast Kluyveromyces marxianus. [2]유산균 Lactobacillus paracasei 4m-2b, Lactobacillus fermentum A15, 초산균 Acetobacter fabarium 4-4M, 그리고 Escherichia 속의 곰팡이 및 박테리아 배양물에 대해 길항 활성을 갖는 젖당 발효 효모 Kluyveromyces marxianus 4MА의 연합 Sarcina, Mycobacterium, Candida, Fusarium, Penicillium은 음료의 스타터로 사용되었습니다. [1] 이 시스템의 경우, 포도당과 갈락토스 대사는 두 개의 음성 조절 유전자 GAL80과 MIG1을 삭제하고 고유하지만 비효율적인 유당 발효 효모인 Kluyveromyces marxianus에서 필수 유당 가수분해효소 LAC4와 유당 수송체 LAC12를 도입함으로써 Saccharomyces cerevisiae에서 분리되었습니다. [2]
Dairy Yeast Kluyveromyces 유제품 효모 클루이베로마이세스
For example, optimal codon usage of GAL genes is greater than 85% of all genes in the genome of the major human pathogen Candida albicans (CUG-Ser1 clade) and greater than 75% of genes in the genome of the dairy yeast Kluyveromyces lactis (family Saccharomycetaceae). [1] The dairy yeast Kluyveromyces marxianus is a promising cell factory for producing bioethanol and heterologous proteins, as well as a robust synthetic biology platform host, due to its safe status and beneficial traits, including fast growth and thermotolerance. [2]예를 들어, GAL 유전자의 최적 코돈 사용은 주요 인간 병원체 Candida albicans(CUG-Ser1 계통)의 게놈에 있는 모든 유전자의 85% 이상이고 낙농 효모인 Kluyveromyces lactis의 게놈에 있는 유전자의 75% 이상입니다( 가족 Saccharomycetaceae). [1] 유제품 효모 Kluyveromyces marxianus는 안전한 상태와 빠른 성장 및 내열성을 포함한 유익한 특성으로 인해 강력한 합성 생물학 플랫폼 숙주뿐만 아니라 바이오에탄올 및 이종 단백질을 생산하기 위한 유망한 세포 공장입니다. [2]
yeast kluyveromyces marxianu 효모 클루이베로마이세스 마르시아누
In this study, we identified ARS-containing sequences from genomic libraries of the yeast Kluyveromyces marxianus DMKU3-1042 and validated their replication activities. [1] An association of lactic acid bacteria Lactobacillus paracasei 4m-2b, Lactobacillus fermentum A15, acetic acid bacteria Acetobacter fabarium 4-4M, and lactose-fermenting yeast Kluyveromyces marxianus 4МА, which has antagonistic activity against fungal and bacterial cultures from the genera Escherichia, Salmonella, Sarcina, Mycobacterium, Candida, Fusarium, Penicillium was used as a starter for the beverage. [2] parapolymorpha were found to be at least an order of magnitude larger than those of the thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus. [3] The culture of the native yeast Kluyveromyces marxianus ITD0090, using a shaker flask stirred at 150 rpm, produced a maximum concentration of 2-PE of 0. [4] The thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus is a promising bioethanol producer, but its fermentation arrested earlier at high temperatures. [5] The aim of this study was to investigate the effect of yeast Kluyveromyces marxianus on the microbial and sensorial properties of probiotic yoghurt during refrigerated storage. [6] For this system, glucose and galactose metabolism were uncoupled in Saccharomyces cerevisiae by deleting two negative regulatory genes, GAL80 and MIG1, and introducing the essential lactose hydrolase LAC4 and lactose transporter LAC12, from the native but inefficient lactose fermenting yeast Kluyveromyces marxianus. [7] Results We work toward this goal by engineering the Shikimate and Ehrlich pathways in the stress-tolerant yeast Kluyveromyces marxianus. [8] To improve the efficiency of second-generation bioethanol production, simultaneous Saccharification and Fermentation (SSF) of top agricultural wastes in the Philippines such as rice straw and banana pseudostem was conducted using commercial enzymes and the thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus. [9] To aid the identification of novel transporters, we developed a screening platform in the native pentose-utilising yeast Kluyveromyces marxianus. [10] To improve efficiency and recapture this lost carbon, we built a two‐stage bioprocessing system pairing the anaerobic fungus Piromyces indianae with the yeast Kluyveromyces marxianus, which grows on a wide range of sugars and fermentation products. [11] In the present study, the kefir yeast Kluyveromyces marxianus 4G5 was used as host for the transformation of form I and form II RubisCO genes derived from the nonsulfur purple bacterium Rhodopseudomonas palustris using the Promoter-based Gene Assembly and Simultaneous Overexpression (PGASO) method. [12] The yeast Kluyveromyces marxianus SLP1 has the potential for application in biotechnological processes because it can metabolize several sugars and produce high-value metabolites. [13] During the fermentation step applying the yeast Kluyveromyces marxianus, ethanol concentrations (g/L) from HPT and APT hydrolyzed liquors were: 8. [14] The dairy yeast Kluyveromyces marxianus is a promising cell factory for producing bioethanol and heterologous proteins, as well as a robust synthetic biology platform host, due to its safe status and beneficial traits, including fast growth and thermotolerance. [15] Thus, this study aimed to investigate the in vitro beneficial properties of Calyptranthes tricona leaf ethanol extract in association or not with the lactic yeast Kluyveromyces marxianus on colon adenocarcinoma Caco-2 cells. [16] The yeast Kluyveromyces marxianus CCT 7735 is capable of producing ethanol from agroindustrial residues, such as lignocellulosic biomass. [17] BackgroundThe thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus is a potential candidate for high-temperature fermentation. [18] To demonstrate the potential, a coculture consisting of the bacterium Lactococcus lactis and the yeast Kluyveromyces marxianus was cultivated. [19] We want to understand the basis of thermotolerance in the industrial yeast Kluyveromyces marxianus. [20] Extracellular lipase activity has been reported for the nonconventional yeast Kluyveromyces marxianus, grown in olive oil as a substrate, and the presence of at least eight putative lipases has been detected in its genome. [21] Thermotolerant yeast Kluyveromyces marxianus can assimilate xylose but cannot produce ethanol from xylose under anaerobic conditions. [22] The present work evaluated the ethanol production by isolates of the yeast Kluyveromyces marxianus using agroindustrial residues as an alternative source of carbon. [23] The fungus Acremonim zeae presented higher phytase production in medium containing cornmeal, while the yeast Kluyveromyces marxianus produced 10-fold more phytase when cultivated on rice bran. [24] The objective of this study was to optimize the ethanol production from cheese whey, using the yeast Kluyveromyces marxianus URM 7404. [25] In this work, we report the development of a simple, fast and practical method that did not use any chemical reagent to identify and evaluate the action of the endoPG enzyme, produced by the yeast Kluyveromyces marxianus CCT3172, using attenuated total reflection Fourier-transform infrared (ATR-FTIR) spectroscopy combined with principal component analysis-linear discriminant analysis (PCA-LDA). [26] 35 g/L bioethanol was produced by a yeast Kluyveromyces marxianus, equivalent to a yield of 0. [27] This method utilizes a recombinant modified SUMO-trapping protein fragment, kmUTAG, derived from the Ulp1 SUMO protease of the stress-tolerant budding yeast Kluyveromyces marxianus. [28]이 연구에서 우리는 효모 Kluyveromyces marxianus DMKU3-1042의 게놈 라이브러리에서 ARS 함유 서열을 확인하고 복제 활성을 검증했습니다. [1] 유산균 Lactobacillus paracasei 4m-2b, Lactobacillus fermentum A15, 초산균 Acetobacter fabarium 4-4M, 그리고 Escherichia 속의 곰팡이 및 박테리아 배양물에 대해 길항 활성을 갖는 젖당 발효 효모 Kluyveromyces marxianus 4MА의 연합 Sarcina, Mycobacterium, Candida, Fusarium, Penicillium은 음료의 스타터로 사용되었습니다. [2] parapolymorpha는 내열성 효모 Kluyveromyces marxianus보다 적어도 10배 더 큰 것으로 밝혀졌습니다. [3] 150rpm으로 교반된 진탕 플라스크를 사용하여 천연 효모 Kluyveromyces marxianus ITD0090의 배양은 0의 2-PE의 최대 농도를 생성했습니다. [4] 내열성 효모 Kluyveromyces marxianus는 유망한 바이오에탄올 생산자이지만 고온에서 발효가 더 일찍 중단됩니다. [5] 이 연구의 목적은 냉장 보관 중 프로바이오틱 요구르트의 미생물 및 감각적 특성에 대한 효모 Kluyveromyces marxianus의 영향을 조사하는 것이었습니다. [6] 이 시스템의 경우, 포도당과 갈락토스 대사는 두 개의 음성 조절 유전자 GAL80과 MIG1을 삭제하고 고유하지만 비효율적인 유당 발효 효모인 Kluyveromyces marxianus에서 필수 유당 가수분해효소 LAC4와 유당 수송체 LAC12를 도입함으로써 Saccharomyces cerevisiae에서 분리되었습니다. [7] 결과 우리는 스트레스 내성 효모 Kluyveromyces marxianus에서 Shikimate 및 Ehrlich 경로를 조작하여 이 목표를 달성하기 위해 노력합니다. [8] 2세대 바이오에탄올 생산의 효율을 높이기 위해 볏짚, 바나나 유사줄기 등 필리핀 최고 농업폐기물의 동시당화발효(SSF)를 상업용 효소와 내열성 효모인 Kluyveromyces marxianus를 이용하여 진행하였습니다. [9] 새로운 수송체의 식별을 돕기 위해 우리는 기본 오탄당 활용 효모 Kluyveromyces marxianus에서 스크리닝 플랫폼을 개발했습니다. [10] 효율성을 높이고 이 손실된 탄소를 회수하기 위해 우리는 혐기성 균류 Piromyces indianae와 다양한 설탕 및 발효 제품에서 자라는 효모 Kluyveromyces marxianus를 결합하는 2단계 바이오프로세싱 시스템을 구축했습니다. [11] 현재 연구에서 케피어 효모 Kluyveromyces marxianus 4G5는 프로모터 기반 유전자 조립 및 동시 과발현(PGASO) 방법을 사용하여 유황이 아닌 보라색 박테리아 Rhodopseudomonas palustris에서 파생된 I형 및 II형 RubisCO 유전자의 형질전환을 위한 숙주로 사용되었습니다. [12] 효모 Kluyveromyces marxianus SLP1은 여러 당을 대사하고 고가의 대사 산물을 생산할 수 있기 때문에 생명공학 공정에 적용할 가능성이 있습니다. [13] 효모 Kluyveromyces marxianus를 적용하는 발효 단계 동안 HPT 및 APT 가수분해액의 에탄올 농도(g/L)는 8이었습니다. [14] 유제품 효모 Kluyveromyces marxianus는 안전한 상태와 빠른 성장 및 내열성을 포함한 유익한 특성으로 인해 강력한 합성 생물학 플랫폼 숙주뿐만 아니라 바이오에탄올 및 이종 단백질을 생산하기 위한 유망한 세포 공장입니다. [15] 따라서, 본 연구는 결장 선암종 Caco-2 세포에서 젖산효모 Kluyveromyces marxianus와 결합하거나 결합하지 않은 Calyptranthes tricona 잎 에탄올 추출물의 시험관내 유익한 특성을 조사하는 것을 목표로 하였다. [16] 효모 Kluyveromyces marxianus CCT 7735는 목질계 바이오매스와 같은 농산업 잔류물로부터 에탄올을 생산할 수 있습니다. [17] 배경 내열성 효모 Kluyveromyces marxianus는 고온 발효의 잠재적 후보입니다. [18] 잠재력을 입증하기 위해 박테리아 Lactococcus lactis와 효모 Kluyveromyces marxianus로 구성된 공동 배양물을 배양했습니다. [19] 우리는 산업용 효모 Kluyveromyces marxianus의 내열성의 기초를 이해하고자 합니다. [20] 세포외 리파아제 활성은 올리브 오일에서 기질로 재배되는 비전통적 효모 Kluyveromyces marxianus에 대해 보고되었으며 게놈에서 최소 8개의 추정 리파아제의 존재가 감지되었습니다. [21] 내열성 효모 Kluyveromyces marxianus는 자일로스를 동화할 수 있지만 혐기성 조건에서 자일로스로부터 에탄올을 생성할 수 없습니다. [22] 현재 연구는 탄소의 대체 공급원으로 농업용 잔류물을 사용하여 효모 Kluyveromyces marxianus의 분리에 의한 에탄올 생산을 평가했습니다. [23] 곰팡이 Acremonim zeae는 옥수수 가루를 함유한 배지에서 더 높은 피타제 생산을 나타내는 반면, 효모 Kluyveromyces marxianus는 쌀겨에서 재배할 때 10배 더 많은 피타제를 생산했습니다. [24] 이 연구의 목적은 효모 Kluyveromyces marxianus URM 7404를 사용하여 치즈 유청에서 에탄올 생산을 최적화하는 것이었습니다. [25] 이 연구에서 우리는 감쇠 전반사 푸리에 변환 적외선을 사용하여 효모 Kluyveromyces marxianus CCT3172에 의해 생성된 endoPG 효소의 작용을 확인하고 평가하기 위해 화학 시약을 사용하지 않는 간단하고 빠르고 실용적인 방법의 개발을 보고합니다. 주성분 분석-선형 판별 분석(PCA-LDA)과 결합된 (ATR-FTIR) 분광법. [26] 35g/L 바이오에탄올은 0의 수율에 해당하는 효모 Kluyveromyces marxianus에 의해 생산되었습니다. [27] 이 방법은 스트레스 내성 신진 효모 Kluyveromyces marxianus의 Ulp1 SUMO 프로테아제에서 파생된 재조합 변형된 SUMO-포착 단백질 단편인 kmUTAG를 사용합니다. [28]
yeast kluyveromyces lacti 효모 클루이베로마이세스 락티
We characterized the genes encoding Rho5 and the subunits of its dimeric activating GEF, Dck1 and Lmo1, in the yeast Kluyveromyces lactis. [1] Here, we outline a technique to monitor wobble uridine status in mcm5s2U-containing tRNAs using the gamma-toxin endonuclease from the yeast Kluyveromyces lactis that naturally cleaves tRNAs containing the mcm5s2U modification. [2] For example, optimal codon usage of GAL genes is greater than 85% of all genes in the genome of the major human pathogen Candida albicans (CUG-Ser1 clade) and greater than 75% of genes in the genome of the dairy yeast Kluyveromyces lactis (family Saccharomycetaceae). [3] cerevisiae, established yeast expression systems including the methylotrophic yeasts Pichia pastoris and Hansenula polymorpha, the dimorphic yeasts Arxula adeninivorans and Yarrowia lipolytica, the lactose-utilizing yeast Kluyveromyces lactis, the fission yeast Schizosaccharomyces pombe, and upcoming yeast platforms, namely, Kluyveromyces marxianus, Candida utilis, and Zygosaccharomyces bailii, are compiled with special emphasis on their genetic toolbox for recombinant protein production. [4] In the yeast Kluyveromyces lactis, the KlMga2 gene is a hypoxic regulatory factor for lipid biosynthesis-fatty acids and sterols-and is also involved in glucose signaling, glucose catabolism and is generally important for cellular fitness. [5] Here we describe the synthesis of FOS catalyzed by a cell-free crude enzyme solution containing recombinant fructosyltransferase (1-FFT) produced in the yeast Kluyveromyces lactis. [6] The yeast Kluyveromyces lactis is an important host for the expression of recombinant proteins at both laboratory and industrial scales. [7] In the yeast Kluyveromyces lactis, sufficient levels of glucose induction of the low-affinity glucose transporter RAG1 gene also depends on a functional glycolysis, suggesting additional intracellular signaling. [8] cerevisiae, established yeast expression systems including the methylotrophic yeasts Pichia pastoris and Hansenula polymorpha, the dimorphic yeasts Arxula adeninivorans and Yarrowia lipolytica, the lactose-utilizing yeast Kluyveromyces lactis, the fission yeast Schizosaccharomyces pombe, and upcoming yeast platforms, namely, Kluyveromyces marxianus, Candida utilis, and Zygosaccharomyces bailii, are compiled with special emphasis on their genetic toolbox for recombinant protein production. [9] Chitinases from the C group show structural similarities with the killer toxin zymocin produced by the yeast Kluyveromyces lactis and it is speculated that they have a similar function in filamentous ascomycetes, by facilitating penetration of toxins into cells of competing individuals. [10]우리는 효모 Kluyveromyces lactis에서 Rho5와 이량체 활성화 GEF, Dck1 및 Lmo1을 인코딩하는 유전자를 특성화했습니다. [1] 여기에서 우리는 mcm5s2U 수정을 포함하는 tRNA를 자연적으로 절단하는 효모 Kluyveromyces lactis의 감마-독소 엔도뉴클레아제를 사용하여 mcm5s2U 함유 tRNA에서 흔들리는 우리딘 상태를 모니터링하는 기술을 설명합니다. [2] 예를 들어, GAL 유전자의 최적 코돈 사용은 주요 인간 병원체 Candida albicans(CUG-Ser1 계통)의 게놈에 있는 모든 유전자의 85% 이상이고 낙농 효모인 Kluyveromyces lactis의 게놈에 있는 유전자의 75% 이상입니다( 가족 Saccharomycetaceae). [3] cerevisiae, methylotrophic 효모 Pichia pastoris 및 Hansenula polymorpha, 이형 효모 Arxula adeninivorans 및 Yarrowia lipolytica, 유당 활용 효모 Kluyveromyces lactis, 분열 효모 Schizosaccharomyces pombe 및 향후 출시될 효모 플랫폼, 즉 utilis 및 Zygosaccharomyces bailii는 재조합 단백질 생산을 위한 유전적 도구 상자를 특별히 강조하여 편집되었습니다. [4] 효모 클루이베로마이세스 락티스(Kluyveromyces lactis)에서 KlMga2 유전자는 지질 생합성(지방산 및 스테롤)에 대한 저산소 조절 인자이며 또한 포도당 신호 전달, 포도당 이화작용에 관여하며 일반적으로 세포 적합성에 중요합니다. [5] 여기에서 우리는 효모 Kluyveromyces lactis에서 생산된 재조합 fructosyltransferase(1-FFT)를 포함하는 무세포 조 효소 용액에 의해 촉매되는 FOS의 합성을 설명합니다. [6] 효모 Kluyveromyces lactis는 실험실 및 산업 규모 모두에서 재조합 단백질의 발현을 위한 중요한 숙주입니다. [7] 효모 Kluyveromyces lactis에서 저친화성 포도당 수송체 RAG1 유전자의 충분한 수준의 포도당 유도는 기능적 해당과정에 의존하며, 이는 추가적인 세포내 신호전달을 시사합니다. [8] cerevisiae, methylotrophic 효모 Pichia pastoris 및 Hansenula polymorpha, 이형 효모 Arxula adeninivorans 및 Yarrowia lipolytica, 유당 활용 효모 Kluyveromyces lactis, 분열 효모 Schizosaccharomyces pombe 및 향후 출시될 효모 플랫폼, 즉 utilis 및 Zygosaccharomyces bailii는 재조합 단백질 생산을 위한 유전적 도구 상자를 특별히 강조하여 편집되었습니다. [9] C 그룹의 키티나아제는 효모 Kluyveromyces lactis가 생산하는 킬러 독소 zymocin과 구조적 유사성을 나타내며 경쟁 개체의 세포로 독소의 침투를 촉진하여 사상 자낭에서 유사한 기능을 하는 것으로 추측됩니다. [10]