Volume Electron(부피 전자)란 무엇입니까?
Volume Electron 부피 전자 - Over the last three decades, bioelectronic applications have been getting great interest due to their low cost, flexible, nontoxic, large-volume electronic components that are sustainable, biocompatible, biodegradable, and bioresorbable. [1] We have investigated detailed plasma structure around the recombination front region (RFR), where volume electron-ion recombination (EIR) strongly occurs in detached plasmas, by using two-dimensional (2D) movable probe system as well as laser Thomson scattering diagnostics. [2]지난 30년 동안 생체 전자 응용 프로그램은 지속 가능하고 생체 적합성, 생분해성 및 생체 재흡수성인 저비용, 유연, 무독성, 대용량 전자 부품으로 인해 큰 관심을 받아 왔습니다. [1] 우리는 2차원(2D) 가동 프로브 시스템과 레이저 Thomson 산란 진단을 사용하여 분리된 플라즈마에서 부피 전자-이온 재결합(EIR)이 강하게 발생하는 재조합 전면 영역(RFR) 주변의 상세한 플라즈마 구조를 조사했습니다. [2]
Large Volume Electron
By providing automated acquisition of large volume electron microscope image stacks, serial block-face electron microscopy (SBEM) creates exciting new possibilities for life science discovery. [1] Our model explains both the significance of the stoichiometric mismatch between reductase and oxidase subunits in the holoenzyme and how SiR can handle such a large volume electron reduction reaction that is at the heart of the sulfur bio-geo cycle. [2]대량 전자 현미경 이미지 스택의 자동 획득을 제공함으로써 직렬 블록면 전자 현미경(SBEM)은 생명 과학 발견을 위한 흥미롭고 새로운 가능성을 만듭니다. [1] 우리의 모델은 holoenzyme에서 reductase와 oxidase subunits 사이의 화학량론적 불일치의 중요성과 SiR이 황 생물 지리 순환의 핵심인 대용량 전자 환원 반응을 처리할 수 있는 방법을 모두 설명합니다. [2]
Quality Volume Electron 품질 볼륨 전자
The biophysical properties of sensory neurons are influenced by their morphometric and morphological features, whose precise measurements require high-quality volume electron microscopy (EM). [1] The biophysical properties of sensory neurons are influenced by their morphometric and morphological features, whose precise measurements require high-quality volume electron microscopy (EM). [2]감각 뉴런의 생물물리학적 특성은 정확한 측정을 위해서는 고품질 부피 전자 현미경(EM)이 필요한 형태학적 및 형태학적 특징의 영향을 받습니다. [1] 감각 뉴런의 생물물리학적 특성은 정확한 측정을 위해서는 고품질 부피 전자 현미경(EM)이 필요한 형태학적 및 형태학적 특징의 영향을 받습니다. [2]
volume electron microscopy 체적 전자 현미경
The biophysical properties of sensory neurons are influenced by their morphometric and morphological features, whose precise measurements require high-quality volume electron microscopy (EM). [1] The visualization of cellular ultrastructure over a wide range of volumes is becoming possible by increasingly powerful techniques grouped under the rubric “volume electron microscopy” or volume EM (vEM). [2] Is volume electron microscopy suitable for high-resolution oocyte imaging in three dimensions (3D)? Focused Ion Bean Scanning Electron Microscopy (FIB-SEM) allows 3D visualization and quantitative analysis of ultrastructural features in the large human oocyte volume. [3] Most recently, the unique advantages of the Nereid young worm for whole-body volume electron microscopy and single-cell sequencing became apparent, enabling the tracing of all neurons in its rope-ladder-like central nervous system, and the construction of multimodal cellular atlases. [4] Advancements in volume electron microscopy mean it is now possible to generate thousands of serial images at nanometre resolution overnight, yet the gold standard approach for data analysis remains manual segmentation by an expert microscopist, resulting in a critical research bottleneck. [5] Recent advances in volume electron microscopy (vEM) have resulted in the production of massive amounts of cellular EM image data, yet only a minuscule fraction of that data is annotated or segmented. [6] Volume electron microscopy (EM) has revolutionized the way in which biologists understand intraand intercellular systems. [7] The biophysical properties of sensory neurons are influenced by their morphometric and morphological features, whose precise measurements require high-quality volume electron microscopy (EM). [8] The volume electron microscopy (EM) allows the identification of synaptic clefts by photoing EM images with high resolution and fine details. [9] Methods: Echocardiography, electrocardiography, micro-computed tomography, quantitative polymerase chain reaction, immunohistochemistry, volume electron microscopy, and sharp microelectrode electrophysiology were used. [10] However, in recent years volume electron microscopy has seen a resurgence in the need for general and specific stains [2, 3] to improve visualisation of cell structure and improve the ability of researchers and computer algorithms to segment and reconstruct those structures in 3D. [11] In recent years new methodologies and workflow pipelines for acquiring correlated fluorescence microscopy and volume electron microscopy datasets have been extensively described and made accessible to users of different levels. [12] To address these knowledge gaps, we combined quantitative volume electron microscopy and comparative transcriptome profiling to create an ‘atlas’ of the cellular and molecular basis of the chytrid life cycle, using the model chytrid Rhizoclosmatium globosum. [13] We describe a protocol for preparation of tissue samples, including primary fixation and backscatter electron contrast-enhancement steps, through dehydration into stable resin-embedded blocks for volume electron microscopy. [14] Here, we present an integrated multi-scale 3D imaging approach that traverses from millimeter-scale live-cell light microscopy to nanoscale volume electron microscopy. [15] Here, we analyzed the calbindin-immunoreactive neurons in the IPL, one of the clearly neurochemically defined interneuron types in the deep layers, using multiple immunolabeling and confocal laser scanning microscopy combined with electron microscopic three-dimensional serial-section reconstruction, enabling correlated laser and volume electron microscopy (EM). [16] In the last years, automated segmentation has become a necessary tool for volume electron microscopy (EM) imaging. [17] We used volume electron microscopy to examine CO relative to the tracheal long axis (TLA) by measuring the inter- and intracellular basal body orientation (BBO) and axonemal orientation (AO), which are considered to coincide, both equivalently indicating the effective stroke direction. [18] Therefore, we observed the morphology of mitochondria and ER via correlative light-electron microscopy (CLEM) and volume electron microscopy techniques using enhanced ascorbate peroxidase 2 and horseradish peroxidase staining. [19] Serial block face-scanning electron microscopy for volume electron microscopy Saskia Lippens, Anna Kremer, Peter Borghgraef and Chris Guerin 5. [20] Mapping all the neurons in the brain requires automatic reconstruction of entire cells from volume electron microscopy data. [21] To analyze the underlying mechanisms we measured odor-evoked activity throughout the OB of a zebrafish larva and reconstructed the wiring diagram in the same specimen by volume electron microscopy. [22] He moved on to Germany in 2009 for further postdoctoral work with Winfried Denk at the Max Planck Institute for Medical Research in Heidelberg, to pursue his work on comprehensive mapping the mammalian whole-brain circuitry and structure at the synaptic level using high-throughput volume electron microscopy. [23] Recently, multidimensional fluorescence microscopy has been correlated with volume electron microscopy, combining molecular and functional information with the overall ultrastructure of infection events. [24] In order to scrutinize this, ventricular cardiac tissue of αT-catenin KO mice was used for volume electron microscopy (VEM), making use of Focused Ion Beam Scanning Electron Microscopy (FIB-SEM), allowing a careful 3D reconstruction of the intercalated disc, including gap junctions and desmosomes. [25] Reconstruction and annotation of volume electron microscopy data sets of brain tissue is challenging but can reveal invaluable information about neuronal circuits. [26] Volume electron microscopy (EM) is now increasingly looked to for answering complex biological questions, thanks in large part to revolutionary developments in instrumentation and sample preparation techniques. [27] Volume electron microscopy allows for the automated acquisition of serial-section imaging data that can be reconstructed in three-dimensions (3D) to provide a detailed, geometrically accurate view of cellular ultrastructure. [28] Volume electron microscopy (EM) has progressively become a driving force in exploring and analysing three-dimensional biological structures across ever-increasing spatial scales. [29] We further explore how this technology unleashes the full potential of FIB-SEM systems, revolutionizing volume electron microscopy (EM) imaging for biology by gaining access to large sample volumes with single-digit nanoscale isotropic resolution. [30]감각 뉴런의 생물물리학적 특성은 정확한 측정을 위해서는 고품질 부피 전자 현미경(EM)이 필요한 형태학적 및 형태학적 특징의 영향을 받습니다. [1] 광범위한 부피에 대한 세포 미세구조의 시각화는 루브릭 "체적 전자 현미경" 또는 볼륨 EM(vEM)으로 분류되는 점점 더 강력한 기술에 의해 가능해지고 있습니다. [2] 체적 전자 현미경은 3차원(3D)의 고해상도 난모세포 이미징에 적합합니까? 집속 이온 콩 주사 전자 현미경(FIB-SEM)을 사용하면 큰 인간 난모세포 부피에서 미세 구조적 특징의 3D 시각화 및 정량 분석이 가능합니다. [3] 가장 최근에, 전신 부피 전자 현미경 및 단일 세포 시퀀싱을 위한 Nereid 어린 벌레의 독특한 이점이 명백해졌으며, 밧줄 사다리와 같은 중추 신경계의 모든 뉴런을 추적하고 다중 모드 세포 지도책의 구성을 가능하게 했습니다. . [4] 체적 전자 현미경의 발전으로 인해 이제 하룻밤 사이에 나노미터 해상도로 수천 개의 직렬 이미지를 생성할 수 있게 되었지만 데이터 분석을 위한 표준 접근 방식은 여전히 전문 현미경 전문가의 수동 분할로 남아 있어 중대한 연구 병목 현상이 발생합니다. [5] 최근 vEM(volume electron microscopy)의 발전으로 엄청난 양의 세포 EM 이미지 데이터가 생성되었지만 해당 데이터의 극히 일부만 주석 처리되거나 분할되었습니다. [6] 체적 전자 현미경(EM)은 생물학자들이 세포 내 및 세포 간 시스템을 이해하는 방식에 혁명을 일으켰습니다. [7] 감각 뉴런의 생물물리학적 특성은 정확한 측정을 위해서는 고품질 부피 전자 현미경(EM)이 필요한 형태학적 및 형태학적 특징의 영향을 받습니다. [8] 체적 전자 현미경(EM)을 사용하면 고해상도 및 미세한 세부 정보로 EM 이미지를 촬영하여 시냅스 틈을 식별할 수 있습니다. [9] 방법: 심장초음파, 심전도, 마이크로컴퓨터단층촬영, 정량적 중합효소연쇄반응, 면역조직화학, 부피전자현미경, 예리한 미세전극 전기생리학을 이용하였다. [10] 그러나 최근에 부피 전자 현미경은 세포 구조의 시각화를 개선하고 연구원과 컴퓨터 알고리즘이 이러한 구조를 3D로 분할 및 재구성하는 능력을 개선하기 위해 일반 및 특정 얼룩[2, 3]에 대한 필요성이 다시 부각되고 있습니다. [11] 최근 몇 년 동안 상관 형광 현미경 및 부피 전자 현미경 데이터 세트를 획득하기 위한 새로운 방법론 및 워크플로우 파이프라인이 광범위하게 설명되어 다양한 수준의 사용자가 액세스할 수 있게 되었습니다. [12] 이러한 지식 격차를 해결하기 위해 우리는 모델 chytrid Rhizoclosmatium globosum을 사용하여 chytrid 수명 주기의 세포 및 분자 기반의 '아틀라스'를 만들기 위해 정량적 부피 전자 현미경과 비교 전사체 프로파일링을 결합했습니다. [13] 우리는 볼륨 전자 현미경을 위한 안정적인 수지 내장 블록으로 탈수를 통해 1차 고정 및 후방 산란 전자 대비 향상 단계를 포함하여 조직 샘플을 준비하기 위한 프로토콜을 설명합니다. [14] 여기에서 우리는 밀리미터 규모의 살아있는 세포 광 현미경에서 나노 규모의 부피 전자 현미경으로 횡단하는 통합된 다중 규모 3D 이미징 접근 방식을 제시합니다. [15] 여기에서 우리는 다중 면역 라벨링 및 공초점 레이저 스캐닝 현미경 검사법과 결합된 전자 현미경 3차원 직렬 섹션 재구성을 사용하여 깊은 층에서 명확하게 신경 화학적으로 정의된 중간 뉴런 유형 중 하나인 IPL의 칼빈딘 면역 반응성 뉴런을 분석하여 상관 레이저 및 체적 전자 현미경(EM). [16] 지난 몇 년 동안 자동화된 분할은 부피 전자 현미경(EM) 이미징에 필요한 도구가 되었습니다. [17] 우리는 체적 전자 현미경을 사용하여 일치하는 것으로 간주되는 세포간 및 세포내 기저체 방향(BBO) 및 축삭 방향(AO)을 측정하여 기관 장축(TLA)에 상대적인 CO를 조사했으며, 둘 다 유효 스트로크 방향을 동등하게 나타냅니다. . [18] 따라서 우리는 향상된 아스코르브산염 퍼옥시다제 2 및 양 고추 냉이 퍼옥시다제 염색을 사용하여 상관 광전자 현미경(CLEM) 및 부피 전자 현미경 기술을 통해 미토콘드리아와 ER의 형태를 관찰했습니다. [19] 체적 전자 현미경을 위한 직렬 블록 얼굴 스캐닝 전자 현미경 Saskia Lippens, Anna Kremer, Peter Borghgraef 및 Chris Guerin 5. [20] 뇌의 모든 뉴런을 매핑하려면 부피 전자 현미경 데이터에서 전체 세포를 자동으로 재구성해야 합니다. [21] 기본 메커니즘을 분석하기 위해 우리는 zebrafish 유충의 OB 전체에 걸쳐 냄새 유발 활동을 측정하고 부피 전자 현미경으로 동일한 표본에서 배선 다이어그램을 재구성했습니다. [22] 그는 하이델베르그의 막스 플랑크 의학 연구 연구소에서 윈프리드 덴크와 함께 박사후 과정을 추가로 수행하기 위해 2009년 독일로 건너갔고, 처리량이 많은 전자를 사용하여 시냅스 수준에서 포유동물의 전뇌 회로와 구조를 포괄적으로 매핑하는 작업을 수행했습니다. 현미경 사용. [23] 최근에 다차원 형광 현미경은 분자 및 기능 정보를 감염 사건의 전체 미세 구조와 결합하여 부피 전자 현미경과 상관 관계가 있습니다. [24] 이를 면밀히 조사하기 위해 αT-카테닌 KO 마우스의 심실 심장 조직을 체적 전자 현미경(VEM)에 사용하여 집속 이온빔 주사 전자 현미경(FIB-SEM)을 사용하여 삽입된 디스크의 신중한 3D 재구성을 허용했습니다. 갭 접합 및 데스모솜을 포함합니다. [25] 뇌 조직의 부피 전자 현미경 데이터 세트의 재구성 및 주석은 어렵지만 신경 회로에 대한 귀중한 정보를 밝힐 수 있습니다. [26] 체적 전자 현미경(EM)은 이제 기기 및 시료 준비 기술의 혁신적인 발전 덕분에 복잡한 생물학적 문제에 대한 답을 찾는 데 점점 더 많이 사용되고 있습니다. [27] 부피 전자 현미경을 사용하면 3차원(3D)으로 재구성할 수 있는 직렬 섹션 이미징 데이터를 자동으로 수집하여 세포 미세구조의 기하학적으로 정확한 상세 보기를 제공할 수 있습니다. [28] 체적 전자 현미경(EM)은 점차 증가하는 공간 규모에 걸쳐 3차원 생물학적 구조를 탐색하고 분석하는 원동력이 되었습니다. [29] 우리는 이 기술이 어떻게 FIB-SEM 시스템의 잠재력을 최대한 발휘하여 한 자릿수 나노스케일 등방성 분해능으로 대량의 시료에 접근할 수 있게 함으로써 생물학을 위한 용적 전자 현미경(EM) 이미징에 혁명을 일으키는지 탐구합니다. [30]