Single Fluorescent(단일 형광등)란 무엇입니까?
Single Fluorescent 단일 형광등 - Suitable quantification approaches that rely on counting and tracking of single fluorescently labelled (bio) nanoparticles are often challenging since fluorophore self-quenching limits the maximum particle brightness. [1] RESULTS Modelling the photo-switching behaviour of a fluorophore as an unobserved continuous time Markov process transitioning between a single fluorescent and multiple dark states, and fully mitigating for missed blinks and false positives, we present a method for computing the exact probability distribution for the number of observed localisations from a single photo-switching fluorophore. [2] Simultaneous sensing of multiple gases by a single fluorescent-based gas sensor is of utmost importance for practical applications. [3] Within both networks, we defined each actin filament’s 3D spatial position, using STORM microscopy, and its polarity by observing the movement of single fluorescent, reporter MyoVa. [4] Modeling the photo-switching behavior of a fluorophore as a continuous time Markov process transitioning between a single fluorescent and multiple dark states, and fully mitigating for missed blinks and false positives, we present a method for computing the exact probability distribution for the number of observed localizations from a single photo-switching fluorophore. [5]형광단 자가 소광이 최대 입자 밝기를 제한하기 때문에 단일 형광 표지된(바이오) 나노 입자의 계산 및 추적에 의존하는 적절한 정량화 접근 방식은 종종 어렵습니다. [1] 결과 단일 형광 및 다중 암 상태 사이를 전환하는 관찰되지 않은 연속 시간 Markov 프로세스로 형광단의 광 전환 동작을 모델링하고 깜박임 누락 및 거짓 긍정을 완전히 완화하여 수에 대한 정확한 확률 분포를 계산하는 방법을 제시합니다. 단일 광전환 형광단에서 관찰된 국소화. [2] 단일 형광 기반 가스 센서로 여러 가스를 동시에 감지하는 것은 실제 응용 분야에서 가장 중요합니다. [3] 두 네트워크 내에서 STORM 현미경을 사용하여 각 액틴 필라멘트의 3D 공간 위치를 정의하고 단일 형광, 리포터 MyoVa의 움직임을 관찰하여 극성을 정의했습니다. [4] 형광단의 광 전환 동작을 단일 형광 및 다중 암 상태 사이에서 전환하는 연속 시간 Markov 프로세스로 모델링하고 깜박임 누락 및 거짓 긍정을 완전히 완화하여 관찰된 수에 대한 정확한 확률 분포를 계산하는 방법을 제시합니다. 단일 광 전환 형광단에서 현지화. [5]
single fluorescent probe 단일 형광 프로브
To resolve this issue, we design and synthesize a new probe ACD-E to monitor cell viability with two kinds of fluorescence signal modes, the first single fluorescent probe that can distinguish three different cell states and furnish accurate information in biological experiments. [1] Here, we proposed a new imaging strategy based on permeability changes of plasma membranes triggered by different CL contents to result in controllable spatial distribution of single fluorescent probes (SF-probes) in subcellular organelles. [2] However, a single fluorescent probe enabling the discriminative and simultaneous visualization of the two organelles has not been reported yet, which brings limitation for the in-depth study on their interplay. [3] Considering the limitation of spatial resolution in conventional microscopy measurements, multiple types of fluorophores assembled within that space would behave as a single fluorescent probe molecule. [4] But single fluorescent probes (SFPs) capable of simultaneous and discriminative visualizing of two organelles above and their interaction in living cells are still challenging due to the lack of rational design strategies. [5] Here we resolved this issue by developing a de novo lipid labeling method for major lipid species, including glycerolipids, glycerophospholipids, and cholesterol esters by using a single fluorescent probe. [6] However, such meaningful investigations remain a great challenge due to the lack of advanced single fluorescent probes (SF-probes) capable of simultaneous and two-color imaging of two targets. [7] Due to their similarities in chemical properties, it is challenging to develop a single fluorescent probe to distinguish them simultaneously. [8] Thus, the development of a single fluorescent probe (SF-probe) for simultaneous and discriminable visualization of different organelles and their dynamics during certain bioprocess is significant, yet remains greatly challenging. [9] Validation of recent findings of hot mitochondria in cancer cells is critically needed, since a single fluorescent probe cannot rule out the possibility of varied cellular uptake efficiencies. [10] In this work, we developed the first example of a single fluorescent probe that displayed a turn-on fluorescence response toward NO and GSH from dual emission channels. [11] To this end, the development of single fluorescent probes for imaging SO2 and biothiols from different emission channels is highly desirable for understanding their physiological nature. [12] We report here the fluorescent sensing of both aromatic and linear saturated dicarboxylate anions (DC2-) (as their tetrabutylammonium salts) with different lengths and shapes in acetonitrile using a single fluorescent probe, i. [13] Hence, the two recognition mechanisms realized well by using a single fluorescent probe. [14] Using a single fluorescent probe, we first achieved dual-channel imaging of the endogenous hypochlorous acid and hydrogen sulfide, respectively, in the lysosomes in the living cells. [15]이 문제를 해결하기 위해 우리는 세 가지 다른 세포 상태를 구별하고 생물학적 실험에서 정확한 정보를 제공할 수 있는 최초의 단일 형광 프로브인 두 종류의 형광 신호 모드로 세포 생존을 모니터링하는 새로운 프로브 ACD-E를 설계 및 합성합니다. [1] 여기에서 우리는 세포 내 소기관에서 단일 형광 프로브(SF-프로브)의 제어 가능한 공간 분포를 초래하기 위해 다른 CL 함량에 의해 촉발된 원형질막의 투과성 변화를 기반으로 하는 새로운 이미징 전략을 제안했습니다. [2] 그러나 두 세포소기관의 구별적이고 동시적인 시각화를 가능하게 하는 단일 형광 프로브는 아직 보고되지 않았으며, 이는 상호작용에 대한 심층 연구에 한계를 가져옵니다. [3] 기존의 현미경 측정에서 공간 해상도의 한계를 고려할 때, 해당 공간 내에 조립된 여러 유형의 형광단은 단일 형광 프로브 분자로 작동합니다. [4] 그러나 위의 두 소기관과 살아있는 세포에서의 상호 작용을 동시에 식별할 수 있는 단일 형광 프로브(SFP)는 합리적인 설계 전략의 부족으로 인해 여전히 도전적입니다. [5] 여기에서 우리는 단일 형광 프로브를 사용하여 글리세로지질, 글리세로인지질 및 콜레스테롤 에스테르를 포함한 주요 지질 종에 대한 새로운 지질 라벨링 방법을 개발하여 이 문제를 해결했습니다. [6] 그러나 이러한 의미 있는 조사는 두 대상의 동시 및 2색 이미징이 가능한 고급 단일 형광 프로브(SF-프로브)의 부족으로 인해 큰 도전으로 남아 있습니다. [7] 화학적 특성의 유사성으로 인해 단일 형광 프로브를 개발하여 동시에 구별하는 것은 어렵습니다. [8] 따라서, 특정 바이오프로세스 동안 다양한 세포소기관과 그 역학을 동시에 식별할 수 있는 시각화를 위한 단일 형광 프로브(SF-프로브)의 개발은 중요하지만 여전히 크게 도전적입니다. [9] 단일 형광 프로브가 다양한 세포 흡수 효율의 가능성을 배제할 수 없기 때문에 암세포에서 뜨거운 미토콘드리아의 최근 발견의 검증이 매우 필요합니다. [10] 이 작업에서 우리는 이중 방출 채널에서 NO 및 GSH에 대한 켜짐 형광 반응을 표시하는 단일 형광 프로브의 첫 번째 예를 개발했습니다. [11] 이를 위해 서로 다른 방출 채널에서 SO2 및 바이오티올을 이미징하기 위한 단일 형광 프로브의 개발은 생리학적 특성을 이해하는 데 매우 바람직합니다. [12] 우리는 여기에서 단일 형광 프로브를 사용하여 아세토니트릴에서 길이와 모양이 다른 방향족 및 선형 포화 디카르복실레이트 음이온(DC2-)(테트라부틸암모늄 염)의 형광 감지를 보고합니다. [13] 따라서 단일 형광 프로브를 사용하여 두 가지 인식 메커니즘을 잘 구현했습니다. [14] 단일 형광 프로브를 사용하여 우리는 먼저 살아있는 세포의 리소좀에서 내인성 차아염소산 및 황화수소의 이중 채널 이미징을 달성했습니다. [15]
single fluorescent protein 단일 형광 단백질
Motivated by the growing importance of single fluorescent protein biosensors (SFPBs) in biological research and the difficulty in rationally engineering these tools, we sought to increase the rate at which SFPB designs can be optimized. [1] Intensiometric genetically encoded biosensors, based on allosteric modulation of the fluorescence of a single fluorescent protein, are powerful tools for enabling imaging of neural activities and other cellular biochemical events. [2] Herein, we have developed a single fluorescent protein (FP)-based indicator using a semirational molecular design and a molecular evolution approach. [3] Single fluorescent protein-based glucose indicators, named "Red Glifons" have been developed that apply to live-cell and dual-color imaging. [4] Here, we combine these two biophysical methodologies in a single home-made instrument to enable the simultaneous detection of orthogonal fluorescence polarization signals from single fluorescent protein molecules used as common reporters on the localization of proteins in cellular processes. [5] Here, we combine these two biophysical methodologies in a single home-made instrument to enable the simultaneous detection of orthogonal fluorescence polarization signals from single fluorescent protein molecules used as common reporters on the localization of proteins in cellular processes. [6] In this review, we discuss the recent genetically-encoded cAMP sensors advances, based on single fluorescent protein (FP), Föster resonance energy transfer (FRET), single luciferase, and bioluminescence resonance energy transfer (BRET) for real-time non-invasive imaging. [7] To address this, we developed a high-affinity bimodal GECI, GLICO, using a single fluorescent protein-based GECI combined with a split luciferase. [8] GINKO1 (green indicator of K+ for optical imaging) is a single fluorescent protein-based K+ indicator constructed by insertion of Kbp into enhanced green fluorescent protein (EGFP). [9] However, single fluorescent protein-based ER calcium probes experience challenges in quantifying the ER calcium store in differing live cells, and intensity-based measurements make it difficult to detect local calcium microdomains in the ER. [10] GINKO1 (green indicator of K+ for optical imaging) is a single fluorescent protein-based K+ indicator constructed by insertion of Kbp into enhanced green fluorescent protein (EGFP). [11] Here, we developed a series of single fluorescent protein (FP)-based glucose indicators, named as "Green Glifons", to understand the hierarchal and mutual relationships between molecules involved in energy metabolism. [12] To address this, we developed a bimodal Ca2+ indicator by combining a single fluorescent protein based Ca2+ indicator and a split luciferase. [13]생물학 연구에서 단일 형광 단백질 바이오센서(SFPB)의 중요성이 커지고 이러한 도구를 합리적으로 엔지니어링하는 데 어려움이 있기 때문에 우리는 SFPB 디자인을 최적화할 수 있는 속도를 높이려고 했습니다. [1] 단일 형광 단백질 형광의 알로스테릭 변조를 기반으로 하는 Intensiometric 유전적으로 인코딩된 바이오센서는 신경 활동 및 기타 세포 생화학 이벤트의 이미징을 가능하게 하는 강력한 도구입니다. [2] 여기에서, 우리는 반합리적인 분자 디자인과 분자 진화 접근법을 사용하여 단일 형광 단백질(FP) 기반 지표를 개발했습니다. [3] 살아있는 세포 및 이중 색상 이미징에 적용되는 "Red Glifons"라는 단일 형광 단백질 기반 포도당 표시기가 개발되었습니다. [4] 여기에서 우리는 이 두 생물물리학적 방법론을 하나의 집에서 만든 기기에 결합하여 세포 과정에서 단백질의 위치에 대한 일반적인 리포터로 사용되는 단일 형광 단백질 분자에서 직교 형광 편광 신호를 동시에 감지할 수 있습니다. [5] 여기에서 우리는 이 두 생물물리학적 방법론을 하나의 집에서 만든 기기에 결합하여 세포 과정에서 단백질의 위치에 대한 일반적인 리포터로 사용되는 단일 형광 단백질 분자에서 직교 형광 편광 신호를 동시에 감지할 수 있습니다. [6] 이 리뷰에서 우리는 실시간 비침습을 위한 단일 형광 단백질(FP), Föster 공명 에너지 전달(FRET), 단일 루시페라제 및 생물 발광 공명 에너지 전달(BRET)을 기반으로 한 최근의 유전적으로 인코딩된 cAMP 센서 발전에 대해 논의합니다. 이미징. [7] 이 문제를 해결하기 위해 우리는 단일 형광 단백질 기반 GECI를 분할 루시페라제와 결합하여 고친화성 바이모달 GECI인 GLICO를 개발했습니다. [8] GINKO1(광학 이미징용 K+의 녹색 표시기)은 Kbp를 강화 녹색 형광 단백질(EGFP)에 삽입하여 구성된 단일 형광 단백질 기반 K+ 표시기입니다. [9] 그러나 단일 형광 단백질 기반 ER 칼슘 프로브는 다른 살아있는 세포에서 ER 칼슘 저장소를 정량화하는 데 어려움을 겪고 있으며 강도 기반 측정은 ER에서 로컬 칼슘 마이크로도메인을 감지하기 어렵게 만듭니다. [10] GINKO1(광학 이미징용 K+의 녹색 표시기)은 Kbp를 강화 녹색 형광 단백질(EGFP)에 삽입하여 구성된 단일 형광 단백질 기반 K+ 표시기입니다. [11] 여기에서 우리는 에너지 대사에 관여하는 분자 간의 계층적 및 상호 관계를 이해하기 위해 "Green Glifons"로 명명된 일련의 단일 형광 단백질(FP) 기반 포도당 표시기를 개발했습니다. [12] 이 문제를 해결하기 위해 단일 형광 단백질 기반 Ca2+ 지표와 분할 루시퍼라제를 결합하여 바이모달 Ca2+ 지표를 개발했습니다. [13]
single fluorescent molecule 단일 형광 분자
A blinking signal with a certain regular pattern enables single fluorescent molecules to be distinguished and resolved from the random background signal. [1] We study the modification of fluorescence emission and decay rate of single fluorescent molecules in the near field of a periodic plasmonic nanostructure formed by a square lattice of Au hollow conical pillars with a periodicity of 250 nm. [2] Photoinduced off-switching of organic fluorophores is routinely used in super-resolution microscopy to separate and localize single fluorescent molecules, but the method typically relies on the use of complex imaging buffers. [3] Through the formation of fluorescent self-interference (SELFI), quantitative intensity and phase imaging enables the 3D localization of single fluorescent molecules inside a fixed tissue with an accuracy well beyond the diffraction limit. [4] We show how the nanoscopy techniques based on registration of single fluorescent molecules (SM) and semiconductor quantum dots (QD) have been extended to perform advanced characterization of dielectric materials. [5] Here, we map the enhanced emission of single fluorescent molecules coupled to a plasmonic particle array with ∼20 nm in-plane resolution by using stochastic super-resolution microscopy. [6]일정한 규칙적인 패턴의 깜박이는 신호는 단일 형광 분자가 임의의 배경 신호와 구별되고 분해되도록 합니다. [1] 우리는 250 nm의 주기성을 가진 Au 중공 원추 기둥의 정사각형 격자에 의해 형성된 주기적 플라즈몬 나노구조의 근거리장에서 단일 형광 분자의 형광 방출 및 붕괴 속도의 수정을 연구합니다. [2] 유기 형광단의 광유도 오프 스위칭은 단일 형광 분자를 분리하고 국소화하기 위해 초해상도 현미경에서 일상적으로 사용되지만 이 방법은 일반적으로 복잡한 이미징 버퍼의 사용에 의존합니다. [3] SELFI(형광 자기 간섭)의 형성을 통해 정량적 강도 및 위상 이미징을 통해 회절 한계를 훨씬 능가하는 정확도로 고정 조직 내부의 단일 형광 분자의 3D 위치를 파악할 수 있습니다. [4] 단일 형광 분자(SM) 및 반도체 양자점(QD)의 등록을 기반으로 하는 나노스코피 기술이 유전 물질의 고급 특성화를 수행하기 위해 어떻게 확장되었는지 보여줍니다. [5] 여기에서 확률론적 초해상도 현미경을 사용하여 ~20nm 면내 해상도로 플라즈몬 입자 어레이에 결합된 단일 형광 분자의 향상된 방출을 매핑합니다. [6]
single fluorescent signal
baumannii), accompanying with the indiscriminate single-stranded DNase activity of LbaCas12a to generate a single fluorescent signal for multiplex PCR products. [1] However, this absolute intensity-dependent single fluorescent signal may be influenced by target concentration-independent factors. [2] In brief, when a pair of specific antibodies is in close proximity, the complementary DNA strands they bear engage into a rolling circle amplification and generate, in situ, a single fluorescent signal, which indicates the presence of a protein-protein interaction. [3]baumannii), LbaCas12a의 무차별 단일 가닥 DNase 활성과 함께 다중 PCR 제품에 대한 단일 형광 신호를 생성합니다. [1] 그러나, 이 절대 강도 의존 단일 형광 신호는 표적 농도 독립적인 요인에 의해 영향을 받을 수 있습니다. [2] 간단히 말해서, 한 쌍의 특정 항체가 매우 근접해 있을 때 이들이 갖고 있는 상보적 DNA 가닥은 회전 원 증폭에 참여하고 제자리에서 단백질-단백질 상호작용의 존재를 나타내는 단일 형광 신호를 생성합니다. [3]
single fluorescent reporter
By using an isogenic mix of three AAVs each expressing single fluorescent reporters, we determined that expression of much greater than 31 AAV genomes per neuron in vitro and 20 genomes per neuron in vivo is obtained across different brain regions including anterior cingulate, prefrontal, somatomotor and somatosensory cortex areas, and cerebellar lobule VI. [1] Within both networks, we defined each actin filament’s 3D spatial position using superresolution stochastic optical reconstruction microscopy (STORM) and its polarity by observing the movement of single fluorescent reporter MyoVa. [2]각각 단일 형광 리포터를 발현하는 3개의 AAV의 동종 혼합을 사용함으로써, 우리는 시험관내 뉴런당 31개보다 훨씬 더 큰 AAV 게놈의 발현 및 생체내 뉴런당 20개 게놈 이상의 발현이 전방 대상, 전전두엽, 체성 운동 및 체성감각 피질 영역 및 소뇌 소엽 VI. [1] 두 네트워크 내에서 단일 형광 리포터 MyoVa의 움직임을 관찰하여 초해상도 확률적 광학 재구성 현미경(STORM)과 극성을 사용하여 각 액틴 필라멘트의 3D 공간 위치를 정의했습니다. [2]
single fluorescent dye
Producing white-light emission from a single fluorescent dye is particularly challenging. [1] However, it is still a challenge to achieve white-light emission from one single fluorescent dye, as the essential requirement of the emission spectrum is that it should be sufficiently broad to cover the entire visible-light region. [2]단일 형광 염료에서 백색광 방출을 생성하는 것은 특히 어렵습니다. [1] 그러나 방출 스펙트럼의 필수 요구 사항은 전체 가시광선 영역을 커버할 수 있을 만큼 충분히 넓어야 하기 때문에 하나의 단일 형광 염료에서 백색광 방출을 달성하는 것은 여전히 어려운 일입니다. [2]
single fluorescent channel 단일 형광 채널
The classification accuracy relies on the usage of real-time data from a single fluorescent channel and benefits from the kinetic and thermodynamic information encoded in the thousands of amplification events produced by high throughput dPCR. [1] Here, we report a single fluorescent channel-based qPCR duplexing method on a model containing the sequence of chromosomes 21 (Chr21) and 18 (Chr18). [2]분류 정확도는 단일 형광 채널의 실시간 데이터 사용에 의존하고 높은 처리량 dPCR에 의해 생성된 수천 개의 증폭 이벤트에서 인코딩된 운동 및 열역학 정보의 이점을 얻습니다. [1] 여기, 우리는 염색체 21(Chr21) 및 18(Chr18)의 서열을 포함하는 모델에서 단일 형광 채널 기반 qPCR 이중화 방법을 보고합니다. [2]