Crispr Cas9 Gene
크리스퍼 Cas9 유전자

Crispr Cas9 Gene(크리스퍼 Cas9 유전자)란 무엇입니까?

Crispr Cas9 Gene 크리스퍼 Cas9 유전자 - Using CRISPR/Cas9 gene editing we corrected the mutation to generate an isogenic control line. ^[1] Using a CRISPR/Cas9 gene editing approach, different fluorescent proteins were fused to β-actin or lamin B1 in hiPSCs and subsequently used as a marker to identify each cell line. ^[2] used genome-scale CRISPR/Cas9 gene editing to identify apolipoprotein L-3 (APOL3) as an IFN-γ–induced bactericidal protein that protects human epithelium, endothelium, and fibroblasts against infection (see the Perspective by Nathan). ^[3] The application of revolutionary clustered regularly interspaced palindromic repeats CRISPR/Cas9 gene-editing tools, along with recently developed technologies for cultivating brain organoids in vitro, have opened new perspectives for the construction of these models. ^[4] With CRISPR/Cas9 gene editing technology, human umbilical cord mesenchymal stem cells (HUMSCs) were directionally induced to differentiate into parathyroid cells. ^[5] Purpose: CRISPR/Cas9 gene editing technology has revolutionized gene manipulation by providing the opportunity of gene knock out/in, transcriptional modification and base editing. ^[6] Treatment classes for ATTR-CM include transthyretin stabilizers, human monoclonal antibodies, gene silencers, and CRISPR/Cas9 gene editing. ^[7] For in vivo assessments, conditional NR5A1 knockout mouse model was established with CRISPR/Cas9 gene targeting technology. ^[8] exigua in spinosyns resistance and provides another example of the use of CRISPR/Cas9 gene-editing technology to confirm the role played by candidate target site mutations in insecticide resistance. ^[9] After the loss of E6/E7 by using CRISPR/Cas9 gene editing, the content of ANT3 and FBLN1 in KoE6/E7 SiHa were downregulated, which indicated the expression of ANT3 and FBLN1 in cervical cancer may be affected by HPV infection. ^[10] We conclude that further studies are required to apply the CRISPR/Cas9 gene-editing system efficiently for the development of a celiac-safe wheat variety and to establish it as a “tool to celiac safe wheat”. ^[11] CRISPR/Cas9 gene editing inserted loxP sites flanking exons 3 and 4 at the Ube2i locus. ^[12] Methods Loss-of-function deletions of aqp0a and/or aqp0b in zebrafish were generated using CRISPR/Cas9 gene editing. ^[13] In this study, we compared the efficiency of CRISPR/Cas9 gene editing for correcting the sickle mutation between frozen CB-derived and fresh adult peripheral blood-derived CD34 cells at day 14 of erythroid differentiation. ^[14] METHODS ChREBP-/- mice (8-week old) were produced using the CRISPR/Cas9 gene editing approach. ^[15] To investigate its role in vivo we deleted five residues within the β 1-2 loop of endogenous Delta by CRISPR/Cas9 gene editing. ^[16] Referring to various genome editing techniques, CRISPR/Cas9 genetic modification is simple to construct and clone and the Cas9 could be used with different guide RNAs controlling different genes. ^[17] Finally, we developed a workflow to use CRISPR/Cas9 gene editing in BBB organoid arrays to knock out regulators of endocytosis specifically in brain endothelial cells in order to dissect the molecular mechanisms of receptor-mediated transcytosis. ^[18] Furthermore, using the optimized protocol, we report for the first time the successful knock-in of GFP at the C-terminus of the PmMOE1 using ribonucleoprotein (RNP)-based CRISPR/Cas9 gene editing methodology. ^[19] Here, we employed a combination of genetic screens in haploid ESCs, CRISPR/Cas9 gene disruption, large‐scale transcriptomics and computational systems biology to delineate the regulatory circuits governing naïve state exit. ^[20] Here we used CRISPR/Cas9 gene editing to test the hypothesis that mutations in the pink bollworm gene encoding ABCA2 (PgABCA2) can cause resistance to Cry2Ab. ^[21] Here, we generated a SCN1A-knockout human iPSC line via CRISPR/Cas9 gene editing. ^[22] We show that genetic STAT3 ablation reduces vascular permeability in STAT3-deficient endothelium of mice and VEGF-inducible zebrafish crossed with CRISPR/Cas9 generated Stat3 knockout zebrafish. ^[23] We constructed β2m knockout mice using CRISPR/Cas9 gene editing tool through embryo microinjection. ^[24] Here, a recombinant PRV (rPRV HN1201-EGFP-Luc) with stable expression of enhanced green fluorescent protein (EGFP) and firefly luciferase as a double reporter virus was constructed on the basis of the PRV variant HN1201 through CRISPR/Cas9 gene-editing technology coupled with two sgRNAs. ^[25] CRISPR/Cas9 gene editing is a revolutionary method used to study gene function by transcript silencing, knock-out, or activation. ^[26] Applications of MNPs in cutting-edge research technologies, such as biomimetic cell membrane nano-gene carriers, exosome-based gene delivery, cell-based drug delivery systems or CRISPR/Cas9 gene editing, are also discussed. ^[27] We speculate that a combination of iPSC and CRISPR/Cas9 gene editing technology will pave the way for rapid advances in regenerative medicine in the future, and for the treatment of hearing loss. ^[28] In order to investigate the molecular mechanism of OsFtsH2 here, several osftsh2 knockout mutants were successfully generated by the CRISPR/Cas9 gene editing technology. ^[29] Using CRISPR/Cas9 gene editing, we generated immortalized human corneal epithelial (hTCEpi) cells lacking c‐Cbl. ^[30] DNMT3A was stably knocked out by CRISPR/Cas9 gene editing technology in 697 cell line. ^[31] Dnah17 knockout rats were generated by CRISPR/Cas9 gene editing. ^[32] Gene therapies for genetic diseases have been sought for decades, and the relatively recent development of the CRISPR/Cas9 gene-editing system has encouraged a new wave of interest in the field. ^[33] CRISPR/Cas9 gene editing produced isogenic control iPSC lines. ^[34] We used CRISPR/Cas9 gene editing to introduce a myostatin (Mstn) deletion into a C2C12 cell line. ^[35] In this paper, the hexokinase gene OsHXK1 was knocked out via the CRISPR/Cas9 gene-editing method in the indica rice varieties Huanghuazhan, Meixiangzhan, and Wushansimiao, and OsHXK1-CRISPR/Cas9 lines were obtained. ^[36] To investigate whether autophagy plays a role during larval-to-juvenile transition, we generated atg7 and beclin1 zebrafish mutant lines using CRISPR/Cas9 gene editing technology. ^[37] Here we report the implementation of CRISPR/Cas9 genetic screening to identify susceptibilities of multiple A3A-expressing lung adenocarcinoma cell lines. ^[38] To construct a safer vector and promote genome integration, the CRISPR/Cas9 gene is cloned into a plasmid-based non-viral safe vector Sleeping-Beauty (SB) transposon in this study to obtain pT2SpCas9. ^[39] We used reporters and CRISPR/Cas9 gene editing to track mRNA translation in cultured neurons. ^[40] ), protoplast techniques are limited to a few genotypes; thus, the use of regular regeneration procedures of multicellular explants causes us to face complexities associated to CRISPR/Cas9 gene editing efficiency and final identification of individuals. ^[41] Expression of proteins in bacteria, genetic modifications of mice and other animals or plants, and the CRISPR/cas9 gene editing technology are described. ^[42] CRISPR/Cas9 gene editing can be used to knockout both membrane and cytoplasmic PD-L1, leading to an enhanced immunotherapeutic strategy. ^[43] Computational analysis of Nrf2-EMT-Notch network and experimental modulation of Nrf2 by pharmacological treatment and CRISPR/Cas9 gene editing reveal that Nrf2 stabilizes a hybrid E/M phenotype maximally observed in the interior region immediately behind the leading edge. ^[44] In this review, we focus on the use of CRISPR/Cas9 gene-editing for curing SCD, including the curative correction of SCD mutation in β-globin (HBB) and the induction of fetal hemoglobin to reverse sickling. ^[45] RESULTS In this study, we use Helicoverpa armigera, an economically important pest worldwide, as a case study to verify the function of SPR in vivo by CRISPR/Cas9 gene editing system. ^[46] Methods By employing the hPSCs to cardiomyocyte (CM) in vitro differentiation system and generating E2A-knockout hESCs using CRISPR/Cas9 gene editing technology, we analyze the functions of E2A in CM differentiation. ^[47] In particular, computational analysis of an Nrf2-EMT-Notch network and experimental modulation of Nrf2 by pharmacological treatment or CRISPR/Cas9 gene editing reveal that Nrf2 stabilizes a hybrid E/M phenotype which is maximally observed in the interior region immediately behind the leading edge. ^[48] CRISPR/Cas9 gene editing produced isogenic control iPSC lines. ^[49]
CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용하여 돌연변이를 수정하여 동종 제어 라인을 생성했습니다. ^[1] CRISPR/Cas9 유전자 편집 방식을 사용하여 다양한 형광 단백질을 hiPSC의 β-액틴 또는 라민 B1에 융합한 후 각 세포주를 식별하기 위한 마커로 사용했습니다. ^[2] 게놈 규모의 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용하여 아포지단백질 L-3(APOL3)을 감염으로부터 인간 상피, 내피 및 섬유아세포를 보호하는 IFN-γ 유도 살균성 단백질로 식별했습니다(Perspective by Nathan 참조). ^[3] 시험관 내에서 뇌 오르가노이드를 배양하기 위해 최근에 개발된 기술과 함께 혁신적인 클러스터형 규칙적으로 간격을 둔 회문 반복 CRISPR/Cas9 유전자 편집 도구의 적용은 이러한 모델의 구성에 대한 새로운 관점을 열었습니다. ^[4] CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술을 통해 인간 탯줄 중간엽 줄기세포(HUMSC)를 방향성 있게 유도하여 부갑상선 세포로 분화시켰다. ^[5] 목적: CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술은 유전자 녹아웃/인, 전사 변형 및 염기 편집의 기회를 제공함으로써 유전자 조작에 혁명을 일으켰습니다. ^[6] ATTR-CM에 대한 치료 클래스에는 트랜스티레틴 안정제, 인간 단일클론 항체, 유전자 사일런서 및 CRISPR/Cas9 유전자 편집이 포함됩니다. ^[7] 생체 내 평가를 위해 조건부 NR5A1 녹아웃 마우스 모델이 CRISPR/Cas9 유전자 표적화 기술로 확립되었습니다. ^[8] 엑시구아는 스피노신 저항성에 영향을 미치고 살충제 저항성에서 후보 표적 부위 돌연변이가 하는 역할을 확인하기 위해 CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술을 사용하는 또 다른 예를 제공합니다. ^[9] CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용하여 E6/E7이 손실된 후 KoE6/E7 SiHa에서 ANT3 및 FBLN1의 함량이 하향 조절되었으며, 이는 자궁경부암에서 ANT3 및 FBLN1의 발현이 HPV 감염의 영향을 받을 수 있음을 나타냅니다. ^[10] 우리는 체강에 안전한 밀 품종의 개발을 위해 CRISPR/Cas9 유전자 편집 시스템을 효율적으로 적용하고 이를 "체강에 안전한 밀을 위한 도구"로 확립하기 위해 추가 연구가 필요하다고 결론지었습니다. ^[11] CRISPR/Cas9 유전자 편집은 Ube2i 유전자좌에서 엑손 3과 4 옆에 loxP 사이트를 삽입했습니다. ^[12] 방법 제브라피쉬에서 aqp0a 및/또는 aqp0b의 기능 상실 삭제는 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용하여 생성되었습니다. ^[13] 이 연구에서 우리는 적혈구 분화 14일째에 냉동 CB 유래 CD34 세포와 신선한 성체 말초 혈액 유래 CD34 세포 간의 낫 돌연변이를 교정하기 위한 CRISPR/Cas9 유전자 편집의 효율성을 비교했습니다. ^[14] 행동 양식 CRISPR/Cas9 유전자 편집 접근법을 사용하여 ChREBP-/- 마우스(8주령)를 생산했습니다. ^[15] 생체 내에서 그 역할을 조사하기 위해 우리는 CRISPR/Cas9 유전자 편집에 의해 내인성 Delta의 β 1-2 루프 내에서 5개의 잔기를 삭제했습니다. ^[16] 다양한 게놈 편집 기술을 참조하면 CRISPR/Cas9 유전자 변형은 구성 및 복제가 간단하며 Cas9는 다른 유전자를 제어하는 ​​다른 가이드 RNA와 함께 사용할 수 있습니다. ^[17] 마지막으로 BBB 오르가노이드 어레이에서 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용하여 수용체 매개 트랜스사이토시스의 분자 메커니즘을 해부하기 위해 특히 뇌 내피 세포에서 엔도사이토시스의 조절자를 녹아웃하는 워크플로를 개발했습니다. ^[18] 또한, 최적화된 프로토콜을 사용하여 리보핵단백질(RNP) 기반 CRISPR/Cas9 유전자 편집 방법을 사용하여 PmMOE1의 C 말단에서 GFP의 성공적인 노크인을 처음으로 보고합니다. ^[19] 여기에서 우리는 반수체 ESC, CRISPR/Cas9 유전자 파괴, 대규모 전사체 및 컴퓨터 시스템 생물학에서 유전적 스크린의 조합을 사용하여 순진한 상태 종료를 제어하는 ​​조절 회로를 설명했습니다. ^[20] 여기에서 우리는 ABCA2(PgABCA2)를 인코딩하는 분홍색 bollworm 유전자의 돌연변이가 Cry2Ab에 대한 내성을 유발할 수 있다는 가설을 테스트하기 위해 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용했습니다. ^[21] 여기에서 우리는 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 통해 SCN1A 녹아웃 인간 iPSC 라인을 생성했습니다. ^[22] 우리는 유전적 STAT3 절제가 STAT3 결핍 내피의 혈관 투과성을 감소시키고 CRISPR/Cas9 생성 Stat3 녹아웃 zebrafish와 교차하는 VEGF 유도성 zebrafish를 보여줍니다. ^[23] 우리는 배아 미세주입을 통해 CRISPR/Cas9 유전자 편집 도구를 사용하여 β2m 녹아웃 마우스를 제작했습니다. ^[24] 여기에서는 CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술을 통해 PRV 변이체 HN1201을 기반으로 이중 리포터 바이러스인 EGFP(Enhanced Green Fluorescent protein)와 반딧불이 루시페라아제(firefly luciferase)가 안정적으로 발현되는 재조합 PRV(rPRV HN1201-EGFP-Luc)를 제작했습니다. 2개의 sgRNA와 결합. ^[25] CRISPR/Cas9 유전자 편집은 전사 침묵, 녹아웃 또는 활성화를 통해 유전자 기능을 연구하는 데 사용되는 혁신적인 방법입니다. ^[26] 생체모방 세포막 나노유전자 운반체, 엑소좀 기반 유전자 전달, 세포 기반 약물 전달 시스템 또는 CRISPR/Cas9 유전자 편집과 같은 첨단 연구 기술에 MNP를 적용하는 방법도 논의됩니다. ^[27] 우리는 iPSC와 CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술의 결합이 미래 재생 의학의 급속한 발전과 난청 치료의 길을 열 것이라고 추측합니다. ^[28] 여기에서 OsFtsH2의 분자 메커니즘을 조사하기 위해 여러 osftsh2 녹아웃 돌연변이가 CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술에 의해 성공적으로 생성되었습니다. ^[29] CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용하여 우리는 c-Cbl이 없는 불멸화된 인간 각막 상피(hTCEpi) 세포를 생성했습니다. ^[30] DNMT3A는 697 세포주에서 CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술에 의해 안정적으로 녹아웃되었습니다. ^[31] Dnah17 녹아웃 쥐는 CRISPR/Cas9 유전자 편집에 의해 생성되었습니다. ^[32] 유전 질환에 대한 유전자 치료법은 수십 년 동안 추구되어 왔으며 비교적 최근에 개발된 CRISPR/Cas9 유전자 편집 시스템은 이 분야에 새로운 관심을 불러일으키고 있습니다. ^[33] CRISPR/Cas9 유전자 편집은 동종 제어 iPSC 라인을 생성했습니다. ^[34] 우리는 C2C12 세포주에 미오스타틴(Mstn) 결실을 도입하기 위해 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용했습니다. ^[35] 본 논문에서는 인디카 벼 품종 Huanghuazhan, Meixiangzhan 및 Wushansimiao에서 CRISPR/Cas9 유전자 편집 방법을 통해 hexokinase 유전자 OsHXK1을 녹아웃시키고 OsHXK1-CRISPR/Cas9 계통을 얻었다. ^[36] autophagy가 유충에서 유충으로의 전환 동안 역할을 하는지 여부를 조사하기 위해 우리는 CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술을 사용하여 atg7 및 beclin1 zebrafish 돌연변이 라인을 생성했습니다. ^[37] 여기에서 우리는 여러 A3A 발현 폐 선암종 세포주의 감수성을 식별하기 위한 CRISPR/Cas9 유전자 스크리닝의 구현을 보고합니다. ^[38] 보다 안전한 벡터를 구성하고 게놈 통합을 촉진하기 위해 이 연구에서 CRISPR/Cas9 유전자를 플라스미드 기반 비바이러스성 안전한 벡터 Sleeping-Beauty(SB) 트랜스포존에 복제하여 pT2SpCas9를 얻습니다. ^[39] 우리는 리포터와 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 사용하여 배양된 뉴런에서 mRNA 번역을 추적했습니다. ^[40] ), 원형질체 기술은 몇 가지 유전자형으로 제한됩니다. 따라서 다세포 외식편의 정기적인 재생 절차를 사용하면 CRISPR/Cas9 유전자 편집 효율성 및 개인의 최종 식별과 관련된 복잡성에 직면하게 됩니다. ^[41] 박테리아의 단백질 발현, 생쥐 및 기타 동식물의 유전적 변형, CRISPR/cas9 유전자 편집 기술에 대해 설명합니다. ^[42] CRISPR/Cas9 유전자 편집은 막과 세포질 PD-L1을 모두 녹아웃하는 데 사용할 수 있어 면역 치료 전략이 향상됩니다. ^[43] Nrf2-EMT-Notch 네트워크의 전산 분석과 약리학적 치료 및 CRISPR/Cas9 유전자 편집에 의한 Nrf2의 실험적 조절은 Nrf2가 첨단 바로 뒤의 내부 영역에서 최대로 관찰되는 하이브리드 E/M 표현형을 안정화시키는 것으로 나타났습니다. ^[44] 이 리뷰에서 우리는 β-글로빈(HBB)의 SCD 돌연변이의 치유적 교정과 겸상을 역전시키기 위한 태아 헤모글로빈의 유도를 포함하여 SCD를 치료하기 위한 CRISPR/Cas9 유전자 편집의 사용에 초점을 맞춥니다. ^[45] 결과 본 연구에서는 CRISPR/Cas9 유전자 편집 시스템에 의해 생체 내에서 SPR의 기능을 검증하기 위한 사례 연구로 전 세계적으로 경제적으로 중요한 해충인 Helicoverpa armigera를 사용합니다. ^[46] 방법 심근세포(CM) 시험관 내 분화 시스템에 hPSC를 사용하고 CRISPR/Cas9 유전자 편집 기술을 사용하여 E2A 녹아웃 hESC를 생성함으로써 CM 분화에서 E2A의 기능을 분석합니다. ^[47] 특히, Nrf2-EMT-Notch 네트워크의 컴퓨터 분석 및 약리학적 치료 또는 CRISPR/Cas9 유전자 편집에 의한 Nrf2의 실험적 조절은 Nrf2가 첨단부 바로 뒤의 내부 영역에서 최대로 관찰되는 하이브리드 E/M 표현형을 안정화시키는 것으로 나타났습니다. . ^[48] CRISPR/Cas9 유전자 편집은 동종 제어 iPSC 라인을 생성했습니다. ^[49]