ゲルマイクロカプセルとは何ですか？
Gel Microcapsules ゲルマイクロカプセル - Membrane emulsification was used to produce a water-in-oil emulsion with the water-soluble polymer subsequently cross-linked to produce hydrogel microcapsules. [1] ABSTRACT We investigated the feasibility of agarose-gel microcapsules to cryopreserve extremely small numbers of sperm for assisted reproductive technology. [2] Results The dermal fibroblasts in alginate hydrogel microcapsules were round in shape, and were distributed as uniform clouds on the surface and gaps of the alginate. [3] Here, we present a multidisciplinary strategy to engineer novel vascularized human induced pluripotent stem cells (hiPSCs)-derived brain organoids system with biomimetic features using microfluidic hydrogel microcapsules. [4] Microfluidic encapsulation of cells/tissues in hydrogel microcapsules has attracted tremendous attention in the burgeoning field of cell-based medicine. [5] The powders were firstly encapsulated in hydrogel bubbles and further dispersed by T-shaped microfluidic flow to form the core/shell-structured powder in hydrogel microcapsules (P/H microcapsules). [6] We report a simple process to fabricate monodisperse tetra-arm poly(ethylene glycol) (tetra-PEG) hydrogel microcapsules with an aqueous core and a semipermeable hydrogel shell through the formation of aqueous two-phase system (ATPS) droplets consisting of a dextran-rich core and a tetra-PEG macromonomer-rich shell, followed by a spontaneous cross-end coupling reaction of tetra-PEG macromonomers in the shell. [7] However, this strategy has been limited by the inability to reproduce large volumes of standardized microcapsules and the lack of information on cell‐specific egress and timed release from hydrogel microcapsules. [8] In this study, we achieved pCPAs concentration (up to 3 M) vitrification by encapsulating HUVECs into core-shell alginate hydrogel microcapsules. [9] We discovered that MCF10A cells, a benign mammary cell line that forms growth-arrested polarized acini in Matrigel, transforms into cancer-like cells within the same Matrigel material following confinement in alginate shell hydrogel microcapsules. [10] Methacrylic anhydride-derived hydrogel microcapsules have unique properties, including reversibly tunable permeation, purification, and separation of dissolved molecular species. [11] The release period of rhodamine 6G can be up to 4 months when using a photocurable resin as the shell material, while the release of rhodamine 6G can be regulated via the osmolality of the incubation solution for porous hydrogel microcapsules. [12] In this study, polymeric nanofibre-integrated alginate (PNA) hydrogel microcapsules were designed using NIM technology. [13] Then, Design-Expert® software was used to optimize the production process of the hydrogel microcapsules. [14] In this study, we achieved pCPA concentration (up to 3 M) vitrification by encapsulating human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) into core-shell alginate hydrogel microcapsules. [15] Hydrogel microcapsules having the ability to promote cell adhesion and proliferation are a useful tool for fabricating tissue in vitro. [16] The cytocompatibility of the 3D printed device is demonstrated by encapsulating mesenchymal stem cells in hydrogel microcapsules, which results in the controllable formation of stem cell spheroids that remain viable and metabolically active for at least 21 days. [17] This magnetically driven hydrogel microcapsules can provide a non-toxically, stable, high precision and high degrees of freedom way to achieve drug controlled release. [18]膜乳化を使用して油中水型エマルジョンを生成し、続いて水溶性ポリマーを架橋してヒドロゲルマイクロカプセルを生成した。 [1] 要約我々は、生殖支援技術のために非常に少数の精子を凍結保存するためのアガロースゲルマイクロカプセルの実現可能性を調査した。 [2] 結果 アルギン酸塩ヒドロゲルマイクロカプセルの皮膚線維芽細胞は丸い形をしており、アルギン酸塩の表面と隙間に均一な雲として分布していた。 [3] ここでは、マイクロ流体ヒドロゲルマイクロカプセルを使用して、生体模倣機能を備えた新規の血管新生化ヒト誘導多能性幹細胞（hiPSC）由来の脳オルガノイドシステムを設計するための学際的戦略を提示します。 [4] ハイドロゲルマイクロカプセルへの細胞/組織のマイクロ流体カプセル化は、細胞ベースの医療の急成長分野で大きな注目を集めています。 [5] 粉末は最初にヒドロゲルの泡にカプセル化され、さらにT字型のマイクロ流体の流れによって分散されて、ヒドロゲルのマイクロカプセル（P / Hマイクロカプセル）にコア/シェル構造の粉末を形成しました。 [6] デキストランからなる水性二相系（ATPS）液滴の形成により、水性コアと半透性ヒドロゲルシェルを備えた単分散テトラアームポリ（エチレングリコール）（テトラ-PEG）ヒドロゲルマイクロカプセルを製造する簡単なプロセスを報告します-豊富なコアとテトラ PEG マクロモノマーが豊富なシェル、続いてシェル内のテトラ PEG マクロモノマーの自発的なクロスエンド カップリング反応。 [7] しかし、この戦略は、標準化されたマイクロカプセルを大量に再現することができないこと、およびヒドロゲルマイクロカプセルからの細胞特異的な放出および時限放出に関する情報の欠如によって制限されてきました。 [8] この研究では、HUVECをコアシェルアルギン酸ヒドロゲルマイクロカプセルにカプセル化することにより、pCPA濃度（最大3 M）のガラス化を達成しました。 [9] MCF10A 細胞は、マトリゲルで増殖停止分極腺房を形成する良性の乳腺細胞株であり、アルギン酸シェル ヒドロゲル マイクロカプセルに閉じ込められた後、同じマトリゲル材料内で癌様細胞に変化することを発見しました。 [10] メタクリル酸無水物由来のヒドロゲル マイクロ カプセルには、可逆的に調整可能な浸透、精製、溶解した分子種の分離など、独自の特性があります。 [11] ローダミン 6G の放出期間は、シェル材料として光硬化性樹脂を使用する場合、最大 4 か月にすることができますが、ローダミン 6G の放出は、多孔性ハイドロゲル マイクロカプセルのインキュベーション ソリューションの浸透圧によって調節できます。 [12] この研究では、高分子ナノファイバー統合アルギン酸 (PNA) ヒドロゲル マイクロ カプセルは、NIM 技術を使用して設計されました。 [13] 次に、Design-Expert® ソフトウェアを使用して、ハイドロゲル マイクロカプセルの製造プロセスを最適化しました。 [14] この研究では、ヒト臍帯静脈内皮細胞 (HUVEC) をコアシェルアルギン酸ヒドロゲルマイクロカプセルにカプセル化することにより、pCPA 濃度 (最大 3 M) のガラス化を達成しました。 [15] 細胞の接着と増殖を促進する能力を持つハイドロゲル マイクロ カプセルは、in vitro で組織を作製するための有用なツールです。 [16] 3D プリントされたデバイスの細胞適合性は、ハイドロゲル マイクロカプセルに間葉系幹細胞をカプセル化することで実証されています。これにより、幹細胞スフェロイドが制御可能に形成され、生存可能で代謝的に少なくとも 21 日間活性が維持されます。 [17] この磁気駆動ハイドロゲル マイクロカプセルは、薬物制御放出を実現するための、非毒性、安定性、高精度、および自由度の高い方法を提供できます。 [18]