大麦の葉とは何ですか？
Barley Leaves 大麦の葉 - Furthermore, aphids’ survival was also not affected when the nymphs fed on leaves supplied with dsRNA via basal cut ends of barley leaves. [1] The triplex assay was used to assess DNA of barley leaves from New South Wales, South Australia, Tasmania, Victoria and Western Australia, along with DNA of seeds from Western Australia. [2] Pathogenicity test showed ΔMoade4 was completely nonpathogenic on rice and barley leaves which was attributed by failure of its infectious hyphae to colonize the host cells. [3] Furthermore, the ΔMocpa1 mutant was nonpathogenic on rice and barley leaves, which was a result of defects in appressorium-mediated penetration and restricted invasive hyphal growth within host cells. [4] Resistance of plants to ionic toxicity of manganese (II) was judged by the value of antioxidant activity (AOA) of superoxide dismutase (SOD), the content of low-molecular antioxidants (chlorophyll a and b, carotenoids and anthocyanins) in barley leaves. [5] The consequences of this leaf disease are due to the impact of the infection on the photosynthetic performance of barley leaves. [6] Alfalfa and barley leaves were not consumed by beetles and did not support beetle reproduction. [7] The Br concentrations were always higher in barley, while the concentrations of pigments in barley leaves were lower than in leaves of wheat. [8] The ΔMogln2 mutant failed to produce spores and was nonpathogenic on barley leaves, as it was unable to form an appressorium-like structure from its hyphal tips. [9] The influence of light and atmospheric CO2 concentration ([CO2]) on the accumulation and localization of PhCs in barley leaves was examined for two varieties with different tolerances to oxidative stress. [10] Disruption of MoHse1 and MoVps27 caused pleiotropic defects in growth, conidiation, sexual development, and pathogenicity, thereby resulting in loss of virulence in rice and barley leaves. [11] Drought decreased the relative water content (RWC) and water potential (WP) in barley leaves. [12] The treatments of the barley leaves with JA and OPDA induced the accumulation of methoxylchalcones, but treatment with 9-KODE did not. [13] In addition, the nitrogen transporter mutants also showed significantly higher 15N incorporation of insect derived nitrogen in barley leaves in the presence of nutrients. [14] The main objective of this study was to identify the correlation magnitude (r) between salt stress level and both agronomic parameters and proline accumulation in barley leaves. [15] Generally, temperature of growth was significant factor influencing on the level of the accumulation of the H+-ATPase and HvPIP1 transcript and the PM H+-ATPase and HvPIP1 protein in barley leaves. [16] Mutation of the ENHANCED MAGNAPORTHE 1 (emr1) locus which can affect mlo-associated disease susceptibility, leads to a reduction in RLS symptoms on barley leaves but does not reduce R. [17] Relaxation of the non-photochemical quenching (NPQ) of Chl a fluorescence after illumination corresponding to the return of the part of LHC2 from PS1 to PS2 was observed in barley leaves in a wider range of increasing light intensities than in Arabidopsis leaves. [18] Pathogenicity assays showed that virulence of the Δfpada1 mutant was dramatically decreased on wheat coleoptiles and barley leaves. [19] 15N from 15NO could be detected in RNA, DNA, and proteins of barley leaves and the 15N levels were significantly higher in HvPgb1. [20] These include phasiRNA loci that overlap with a significant proportion of receptor-like kinases, suggesting an additional sRNA control mechanism may be active in barley leaves as opposed to predominant R-gene phasiRNA overlap in many eudicots. [21] The reflectance of the barley leaves was significantly (p ≤ 0. [22] Disruption of MoYCK1 caused pleiotropic defects in growth, conidiation, conidial germination, and appressorium formation and penetration, therefore resulting in reduced virulence in rice seedlings and barley leaves. [23]さらに、オオムギの葉の基部切断端を介してdsRNAが供給された葉を食べたニンフは、アブラムシの生存にも影響を与えませんでした。 [1] トリプレックスアッセイは、ニューサウスウェールズ州、南オーストラリア州、タスマニア州、ビクトリア州、西オーストラリア州の大麦の葉のDNAと、西オーストラリア州の種子のDNAを評価するために使用されました。 [2] 病原性試験は、ΔMoade4がイネおよびオオムギの葉に対して完全に非病原性であることを示しました。これは、その感染性菌糸が宿主細胞にコロニーを形成できなかったことが原因でした。 [3] さらに、ΔMocpa1変異体は、イネおよびオオムギの葉に対して非病原性であり、これは、付着器を介した浸透の欠陥および宿主細胞内の侵襲性菌糸の成長の制限の結果でした。 [4] マンガン（II）のイオン毒性に対する植物の耐性は、スーパーオキシドジスムターゼ（SOD）の抗酸化活性（AOA）の値、大麦の葉の低分子抗酸化剤（クロロフィルaおよびb、カロテノイドおよびアントシアニン）の含有量によって判断されました。 [5] この葉の病気の結果は、オオムギの葉の光合成性能に対する感染の影響によるものです。 [6] アルファルファとオオムギの葉はカブトムシによって消費されず、カブトムシの繁殖をサポートしませんでした。 [7] オオムギの葉の色素濃度は小麦の葉よりも低かったのに対し、Br濃度はオオムギでは常に高かった。 [8] ΔMogln2変異体は、菌糸の先端から付着器のような構造を形成することができなかったため、胞子を生成できず、オオムギの葉では非病原性でした。 [9] オオムギの葉におけるPhCの蓄積と局在化に対する光と大気のCO2濃度（[CO2]）の影響を、酸化ストレスに対する耐性が異なる2つの品種について調べました。 [10] MoHse1とMoVps27の破壊は、成長、分生子形成、性的発達、および病原性に多面的な欠陥を引き起こし、それによってイネとオオムギの葉の毒性を失いました。 [11] 干ばつにより、オオムギの葉の相対含水量（RWC）と水ポテンシャル（WP）が減少しました。 [12] 大麦の葉をJAとOPDAで処理すると、メトキシルカルコンの蓄積が誘導されましたが、9-KODEで処理しても誘導されませんでした。 [13] さらに、窒素トランスポーター変異体は、栄養素の存在下でオオムギの葉への昆虫由来窒素の有意に高い 15N 取り込みも示しました。 [14] この研究の主な目的は、塩ストレスレベルと農業パラメータおよびオオムギの葉のプロリン蓄積との間の相関の大きさ (r) を特定することでした。 [15] 一般に、成長温度は、オオムギの葉における H+-ATPase および HvPIP1 転写産物と PM H+-ATPase および HvPIP1 タンパク質の蓄積レベルに影響を与える重要な要因でした。 [16] MLO関連疾患の感受性に影響を与える可能性のある ENHANCED MAGNAPORTHE 1 (emr1) 遺伝子座の変異は、オオムギの葉の RLS 症状の軽減につながりますが、R は軽減しません。 [17] PS1 から PS2 への LHC2 の一部の復帰に対応する照射後の Chl a 蛍光の非光化学消光 (NPQ) の緩和は、シロイヌナズナの葉よりも広い範囲の増加する光強度でオオムギの葉で観察されました。 [18] 病原性アッセイにより、Δfpada1変異体の病原性がコムギ子葉鞘およびオオムギの葉で劇的に減少したことが示された。 [19] 15NO からの 15N はオオムギの葉の RNA、DNA、およびタンパク質で検出でき、15N レベルは HvPgb1 で有意に高かった。 [20] これらには、かなりの割合の受容体様キナーゼと重複する phasiRNA 遺伝子座が含まれており、追加の sRNA 制御メカニズムが、多くのユーディコットで優勢な R 遺伝子 phasiRNA 重複とは対照的に、オオムギの葉で活性である可能性があることを示唆しています。 [21] オオムギの葉の反射率は有意でした (p ≤ 0. [22] MoYCK1 の破壊は、成長、分生子形成、分生子発芽、および付着器の形成と浸透に多面的な欠陥を引き起こし、その結果、イネの苗木とオオムギの葉の病原性が低下しました。 [23]
Young Barley Leaves
Young barley leaves (Hordeum vulgare L. [1] In this study, the effect of light on the regulation of flavonoid production in young barley leaves (YBLs) was investigated. [2] The aim of this study was to preliminary investigate the possibility of using young barley leaves and shoots for the production of green juice with potential health properties. [3] It was found that the contents of K and Ca in the young barley leaves were lower, as compared to control plants. [4]若い大麦の葉（Hordeum vulgare L. [1] この研究では、大麦若葉 (YBL) におけるフラボノイド産生の調節に対する光の影響を調査しました。 [2] この研究の目的は、潜在的な健康特性を持つ青汁の生産のために大麦の若葉と新芽を使用する可能性を予備的に調査することでした. [3] オオムギの若葉中のKとCaの含有量は、対照植物と比較して低いことがわかった。 [4]